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磁共振兼容型大鼠小鼠監(jiān)護(hù)儀,是starr公司為MRI磁共振環(huán)境下大鼠、小鼠的生命體征檢測(cè)專門開發(fā)的設(shè)備。
可以在MRI環(huán)境下,無(wú)創(chuàng)測(cè)量小動(dòng)物(幼鼠,小鼠,大鼠,豚鼠,兔,等)的血氧飽和度,脈搏頻率,呼吸頻率,脈搏幅度,呼吸幅度;
所有測(cè)量都是通過(guò)一個(gè)無(wú)創(chuàng)的感應(yīng)器;
主要功能:
· 無(wú)磁探頭,適合核磁環(huán)境中監(jiān)測(cè)動(dòng)物的生命體征;
· 監(jiān)測(cè)和記錄多種心肺功能參數(shù):動(dòng)脈血氧飽和度,脈搏,脈搏幅度,呼吸頻率,呼吸幅度
· 可輸出模擬數(shù)據(jù)
所有測(cè)量都是通過(guò)一個(gè)無(wú)創(chuàng)的感應(yīng)器完成,準(zhǔn)確、方便、高效。
型號(hào):MouseOx
有多種探頭可供選擇:
根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求:可選擇大鼠型探頭、小鼠型探頭;
根據(jù)動(dòng)物狀態(tài):可選擇清醒活動(dòng)狀態(tài)連續(xù)測(cè)量和麻醉(或手術(shù))狀態(tài)測(cè)量探頭;
根據(jù)動(dòng)物數(shù)量:有多通道適配器可供選擇,同時(shí)檢測(cè)多只動(dòng)物的生命體征;
根據(jù)使用環(huán)境:可選擇核磁環(huán)境適用的無(wú)磁探頭;
經(jīng)過(guò)驗(yàn)證的準(zhǔn)確度:
使用有創(chuàng)血?dú)獠蓸訙y(cè)量結(jié)果與無(wú)創(chuàng) MouseOx 測(cè)量結(jié)果的比較, 對(duì)比表明, 兩者具有很好的線性關(guān)系。
脈搏、血氧、呼吸等心肺監(jiān)測(cè)參數(shù):
· 脈波頻率在90到900BPM范圍內(nèi)監(jiān)測(cè) (每分鐘心跳, Beat per minutes, BPM)
· 血氧飽和度監(jiān)測(cè)范圍:0% 到100% 動(dòng)脈血氧飽和度;
· 血氧飽和度監(jiān)測(cè)誤差:<1.5% 橫跨整個(gè)監(jiān)測(cè)范圍;
· 血氧飽和度監(jiān)測(cè)反應(yīng)時(shí)間:實(shí)時(shí)報(bào)告動(dòng)脈血氧飽和度, 在每次心跳以后0.72秒屏幕刷新;
· 呼吸頻率監(jiān)測(cè)范圍:每分鐘 25到450 次;
· 監(jiān)測(cè)反應(yīng)時(shí)間:呼吸率每1.7秒向用戶報(bào)告, 移動(dòng)報(bào)告的值是10次呼吸的的平均數(shù);
· 無(wú)創(chuàng)傷監(jiān)測(cè)脈搏充盈度以估量血流量的變化;
· 脈搏監(jiān)測(cè)范圍:內(nèi)徑0到800微米的徽小血管;
· 監(jiān)測(cè)誤差:< 2.4%橫跨整個(gè)監(jiān)測(cè)范圍;
· 監(jiān)測(cè)反應(yīng)時(shí)間:脈搏充盈度實(shí)時(shí)向用戶報(bào)告, 在每次心跳以后,0.72秒屏幕刷新,刷新屏幕顯示被測(cè)量的所有脈搏充盈度;
· 無(wú)創(chuàng)傷監(jiān)測(cè)動(dòng)物呼吸幅度的變化;
· 呼吸幅度監(jiān)測(cè)范圍:每分鐘25到450次;
· 呼吸幅度監(jiān)測(cè)反應(yīng)時(shí)間:呼吸率每1.7秒向用戶報(bào)告, 移動(dòng)報(bào)告的值是10次呼吸的的平均數(shù);
血氧呼吸數(shù)據(jù)采集器:
8通道數(shù)據(jù)采集器
可對(duì)1-8只老鼠進(jìn)行脈搏、血氧、呼吸的數(shù)據(jù)測(cè)量
模擬信號(hào)輸出模塊:
搭配模擬信號(hào)輸出模塊實(shí)時(shí)輸出模擬心博
多鐘測(cè)試探頭可選:
根據(jù)需要,可選擇老鼠清醒狀態(tài)下使用的頸部探頭,麻醉狀態(tài)下使用的足部探頭和大腿探頭
測(cè)量軟件:
實(shí)時(shí)顯示監(jiān)測(cè)數(shù)據(jù),具有診斷模式,具備報(bào)價(jià)功能,數(shù)據(jù)可儲(chǔ)存為Text貨Windaq格式
玉研儀器是美國(guó)STARR公司的授權(quán)中國(guó)代理,美國(guó)Starr公司的Mouseox是應(yīng)用于小鼠和大鼠的多參數(shù)監(jiān)護(hù)儀,可以測(cè)量脈搏血氧,呼吸,心率,脈搏幅度,呼吸幅度,體溫等參數(shù)。詳情請(qǐng)來(lái)電咨詢!
參考文獻(xiàn):
1.Suzuki R, Yamasoba D, Kimura I, et al. Attenuated fusogenicity and pathogenicity of SARS-CoV-2 Omicron variant[J]. Nature, 2022, 603(7902): 700-705.
2.Wang G, Wen B, Deng Z, et al. Endothelial progenitor cells stimulate neonatal lung angiogenesis through FOXF1-mediated activation of BMP9/ACVRL1 signaling[J]. Nature communications, 2022, 13(1): 1-16.
3.Aiba I, Noebels J L. Kcnq2/Kv7. 2 controls the threshold and bi-hemispheric symmetry of cortical spreading depolarization[J]. Brain, 2021, 144(9): 2863-2878.
4.Bachus H, Kaur K, Papillion A M, et al. Impaired tumor-necrosis-factor-α-driven dendritic cell activation limits lipopolysaccharide-induced protection from allergic inflammation in infants[J]. Immunity, 2019, 50(1): 225-240. e4.
5.Han W, Tellez L A, Perkins M H, et al. A neural circuit for gut-induced reward[J]. Cell, 2018, 175(3): 665-678. e23.
6.Lai A Y, Dorr A, Thomason L A M, et al. Venular degeneration leads to vascular dysfunction in a transgenic model of Alzheimer’s disease[J]. Brain, 2015, 138(4): 1046-1058.
7.Thomas G M, Carbo C, Curtis B R, et al. Extracellular DNA traps are associated with the pathogenesis of TRALI in humans and mice[J]. Blood, The Journal of the American Society of Hematology, 2012, 119(26): 6335-6343.
8.Dorr A, Sahota B, Chinta L V, et al. Amyloid-β-dependent compromise of microvascular structure and function in a model of Alzheimer’s disease[J]. Brain, 2012, 135(10): 3039-3050.
9.Abt M C, Osborne L C, Monticelli L A, et al. Commensal bacteria calibrate the activation threshold of innate antiviral immunity[J]. Immunity, 2012, 37(1): 158-170.
Fung Y L, Kim M, Tabuchi A, et al. Recipient T lymphocytes modulate the severity of antibody-mediated transfusion-related acute lung injury[J]. Blood, The Journal of the American Society of Hematology, 2010, 116(16): 3073-3079.
磁共振兼容型大鼠小鼠監(jiān)護(hù)儀,是starr公司為MRI磁共振環(huán)境下大鼠、小鼠的生命體征檢測(cè)專門開發(fā)的設(shè)備。
可以在MRI環(huán)境下,無(wú)創(chuàng)測(cè)量小動(dòng)物(幼鼠,小鼠,大鼠,豚鼠,兔,等)的血氧飽和度,脈搏頻率,呼吸頻率,脈搏幅度,呼吸幅度;
所有測(cè)量都是通過(guò)一個(gè)無(wú)創(chuàng)的感應(yīng)器;
主要功能:
· 無(wú)磁探頭,適合核磁環(huán)境中監(jiān)測(cè)動(dòng)物的生命體征;
· 監(jiān)測(cè)和記錄多種心肺功能參數(shù):動(dòng)脈血氧飽和度,脈搏,脈搏幅度,呼吸頻率,呼吸幅度
· 可輸出模擬數(shù)據(jù)
所有測(cè)量都是通過(guò)一個(gè)無(wú)創(chuàng)的感應(yīng)器完成,準(zhǔn)確、方便、高效。
型號(hào):MouseOx
有多種探頭可供選擇:
根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求:可選擇大鼠型探頭、小鼠型探頭;
根據(jù)動(dòng)物狀態(tài):可選擇清醒活動(dòng)狀態(tài)連續(xù)測(cè)量和麻醉(或手術(shù))狀態(tài)測(cè)量探頭;
根據(jù)動(dòng)物數(shù)量:有多通道適配器可供選擇,同時(shí)檢測(cè)多只動(dòng)物的生命體征;
根據(jù)使用環(huán)境:可選擇核磁環(huán)境適用的無(wú)磁探頭;
經(jīng)過(guò)驗(yàn)證的準(zhǔn)確度:
使用有創(chuàng)血?dú)獠蓸訙y(cè)量結(jié)果與無(wú)創(chuàng) MouseOx 測(cè)量結(jié)果的比較, 對(duì)比表明, 兩者具有很好的線性關(guān)系。
脈搏、血氧、呼吸等心肺監(jiān)測(cè)參數(shù):
· 脈波頻率在90到900BPM范圍內(nèi)監(jiān)測(cè) (每分鐘心跳, Beat per minutes, BPM)
· 血氧飽和度監(jiān)測(cè)范圍:0% 到100% 動(dòng)脈血氧飽和度;
· 血氧飽和度監(jiān)測(cè)誤差:<1.5% 橫跨整個(gè)監(jiān)測(cè)范圍;
· 血氧飽和度監(jiān)測(cè)反應(yīng)時(shí)間:實(shí)時(shí)報(bào)告動(dòng)脈血氧飽和度, 在每次心跳以后0.72秒屏幕刷新;
· 呼吸頻率監(jiān)測(cè)范圍:每分鐘 25到450 次;
· 監(jiān)測(cè)反應(yīng)時(shí)間:呼吸率每1.7秒向用戶報(bào)告, 移動(dòng)報(bào)告的值是10次呼吸的的平均數(shù);
· 無(wú)創(chuàng)傷監(jiān)測(cè)脈搏充盈度以估量血流量的變化;
· 脈搏監(jiān)測(cè)范圍:內(nèi)徑0到800微米的徽小血管;
· 監(jiān)測(cè)誤差:< 2.4%橫跨整個(gè)監(jiān)測(cè)范圍;
· 監(jiān)測(cè)反應(yīng)時(shí)間:脈搏充盈度實(shí)時(shí)向用戶報(bào)告, 在每次心跳以后,0.72秒屏幕刷新,刷新屏幕顯示被測(cè)量的所有脈搏充盈度;
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· 呼吸幅度監(jiān)測(cè)范圍:每分鐘25到450次;
· 呼吸幅度監(jiān)測(cè)反應(yīng)時(shí)間:呼吸率每1.7秒向用戶報(bào)告, 移動(dòng)報(bào)告的值是10次呼吸的的平均數(shù);
血氧呼吸數(shù)據(jù)采集器:
8通道數(shù)據(jù)采集器
可對(duì)1-8只老鼠進(jìn)行脈搏、血氧、呼吸的數(shù)據(jù)測(cè)量
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實(shí)時(shí)顯示監(jiān)測(cè)數(shù)據(jù),具有診斷模式,具備報(bào)價(jià)功能,數(shù)據(jù)可儲(chǔ)存為Text貨Windaq格式
玉研儀器是美國(guó)STARR公司的授權(quán)中國(guó)代理,美國(guó)Starr公司的Mouseox是應(yīng)用于小鼠和大鼠的多參數(shù)監(jiān)護(hù)儀,可以測(cè)量脈搏血氧,呼吸,心率,脈搏幅度,呼吸幅度,體溫等參數(shù)。詳情請(qǐng)來(lái)電咨詢!
參考文獻(xiàn):
1.Suzuki R, Yamasoba D, Kimura I, et al. Attenuated fusogenicity and pathogenicity of SARS-CoV-2 Omicron variant[J]. Nature, 2022, 603(7902): 700-705.
2.Wang G, Wen B, Deng Z, et al. Endothelial progenitor cells stimulate neonatal lung angiogenesis through FOXF1-mediated activation of BMP9/ACVRL1 signaling[J]. Nature communications, 2022, 13(1): 1-16.
3.Aiba I, Noebels J L. Kcnq2/Kv7. 2 controls the threshold and bi-hemispheric symmetry of cortical spreading depolarization[J]. Brain, 2021, 144(9): 2863-2878.
4.Bachus H, Kaur K, Papillion A M, et al. Impaired tumor-necrosis-factor-α-driven dendritic cell activation limits lipopolysaccharide-induced protection from allergic inflammation in infants[J]. Immunity, 2019, 50(1): 225-240. e4.
5.Han W, Tellez L A, Perkins M H, et al. A neural circuit for gut-induced reward[J]. Cell, 2018, 175(3): 665-678. e23.
6.Lai A Y, Dorr A, Thomason L A M, et al. Venular degeneration leads to vascular dysfunction in a transgenic model of Alzheimer’s disease[J]. Brain, 2015, 138(4): 1046-1058.
7.Thomas G M, Carbo C, Curtis B R, et al. Extracellular DNA traps are associated with the pathogenesis of TRALI in humans and mice[J]. Blood, The Journal of the American Society of Hematology, 2012, 119(26): 6335-6343.
8.Dorr A, Sahota B, Chinta L V, et al. Amyloid-β-dependent compromise of microvascular structure and function in a model of Alzheimer’s disease[J]. Brain, 2012, 135(10): 3039-3050.
9.Abt M C, Osborne L C, Monticelli L A, et al. Commensal bacteria calibrate the activation threshold of innate antiviral immunity[J]. Immunity, 2012, 37(1): 158-170.
Fung Y L, Kim M, Tabuchi A, et al. Recipient T lymphocytes modulate the severity of antibody-mediated transfusion-related acute lung injury[J]. Blood, The Journal of the American Society of Hematology, 2010, 116(16): 3073-3079.