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冷熱板測試儀是評估動物冷、熱痛覺異常性疼痛和痛覺過敏研究的經典工具,常用于慢性疼痛、神經病理性疼痛等鎮(zhèn)痛藥物研發(fā)、篩選和藥效評估實驗中。
在動物疼痛研究中,冷熱板測試一直是嚙齒動物冷、熱痛試驗的金標準。除了*常用的恒溫方法外,研究者越來越偏愛能夠以給定的時間速率將溫度從起始點提高/降低到終點的設備,以區(qū)分傷害感受器亞型,從而檢測痛覺過敏和異常性疼痛的差異。
Ugo basile冷熱板測試儀具有溫度變化范圍廣、多階段測試可調等優(yōu)點,可以靈活地進行從大小鼠痛覺過敏到異常性疼痛的多種疼痛實驗。設備的靜音運行模式可將實驗動物的干擾降到**,保證動物每次的傷害性反應都可在無拘束的自然條件下得出;并可通過U盤將實驗數據導出為CSV文件,方便數據統計與處理。
在主機設置初始溫度和目標溫度后,將大鼠(小鼠)放置在冷熱板上,冷熱板會以穩(wěn)定的速率進行降溫或加熱,當溫度達到疼痛的敏感性節(jié)點時,引起動物傷害性反應(后爪舔舐、退縮或跳躍)。
優(yōu)勢特點:
1. 三種溫度控制模式,升降溫速率自定義程度高
恒定溫度模式:可控制溫度在設定時間內持續(xù)穩(wěn)定。
線性升降溫模式:可控制單位時間內溫度變化速率恒定。
急速升降溫模式:可控制在*快時間達到目標溫度。
2. 大范圍溫度控制,冷、熱刺激雙模式
具有冷板和熱板兩種工作模式,-5℃至65℃大范圍溫度控制,切換控溫模式方便快捷??珊w多種動物模型,應用**,在疼痛實驗方案中獲得的數據更**。
3. 可通過軟件編輯多個溫控階段
系統標配X-PAD軟件,用戶可自定義多段升降溫模式,設置動物組別,并通過U盤將其上傳到冷熱板測試儀進行自動控制測試。
4. 具備數字鍵盤和腳踏板,記錄動物反應和刻板行為
標配數字鍵盤和腳踏板,可以預設 10 個按鍵用以記錄疼痛動物的異常反應和刻板行為(如舔、抓、跳、梳理、發(fā)聲、直立、靜止、攀爬、顫抖、抽搐)并將結果保存在測試主機中。
應用領域:
冷熱板測試儀**用于研究傷害感受器、溫度感知受體、冷熱異常性疼痛和痛覺過敏的基礎機制研究,以及炎癥與神經理性疼痛疾病中鎮(zhèn)痛藥物(如阿片類藥物)的精確、快速篩選測試,測試化合物抗傷害的藥效,如坐骨神經慢性收縮損傷(CCI)模型。
型號規(guī)格:
35300 | 冷熱板完整套裝,包括主機、數字鍵盤、動物活動籠、U盤及軟件等 |
參考文獻:
1.Orthofer, Michael, et al. "Identification of ALK in Thinness." Cell 181.6 (2020): 1246-1262.doi: 10.1016/j.cell.2020.04.034
2.Trendafilova, Teodora, et al. "Sodium-calcium exchanger-3 regulates pain “wind-up”: From human psychophysics to spinal mechanisms." Neuron 110.16 (2022): 2571-2587.
3.Cao, Chenxi, et al. "Cholesterol-induced LRP3 downregulation promotes cartilage degeneration in osteoarthritis by targeting Syndecan-4." Nature Communications 13.1 (2022): 7139. doi: 10.1038/s41467-022-34830-4
4.Prieto, Martin, et al. "Light activated pulsatile drug delivery for prolonged peripheral nerve block." Biomaterials 283 (2022): 121453. doi: 10.1016/j.biomaterials.2022.121453
5.Hou, Yiwen, et al. "Coordinated activity of a central pathway drives associative opioid analgesic tolerance." Science Advances 9.6 (2023): eabo5627. doi:
6.Xing, Lei, et al. "Expression of human‐specific ARH***11B in mice leads to neocortex expansion and increased memory flexibility." The EMBO journal 40.13 (2021): e107093.
7.Cetin, Zeynep, et al. "The Role of Hydrogen Sulfide in the Development of Tolerance and Dependence to Morphine in Mice." Neuropsychobiology 80.3 (2021): 264-270. doi: 10.1159/000511541
8.Ford, Neil C., et al. "Role of primary sensory neurone cannabinoid type-1 receptors in pain and the analgesic effects of the peripherally acting agonist CB-13 in mice." British journal of anaesthesia 128.1 (2022): 159-173.doi:10.1016/j.bja.2021.10.020
9.Blomqvist, Kim J., et al. "Systemic hypertonic saline enhances glymphatic spinal cord delivery of lumbar intrathecal morphine." Journal of Controlled Release 344 (2022): 214-224. doi:10.1016/j.jconrel.2022.03.022
10.Gan, Zheng, et al. "Repetitive non-invasive prefrontal stimulation reverses neuropathic pain via neural remodelling in mice." Progress in neurobiology 201 (2021): 102009.
冷熱板測試儀是評估動物冷、熱痛覺異常性疼痛和痛覺過敏研究的經典工具,常用于慢性疼痛、神經病理性疼痛等鎮(zhèn)痛藥物研發(fā)、篩選和藥效評估實驗中。
在動物疼痛研究中,冷熱板測試一直是嚙齒動物冷、熱痛試驗的金標準。除了*常用的恒溫方法外,研究者越來越偏愛能夠以給定的時間速率將溫度從起始點提高/降低到終點的設備,以區(qū)分傷害感受器亞型,從而檢測痛覺過敏和異常性疼痛的差異。
Ugo basile冷熱板測試儀具有溫度變化范圍廣、多階段測試可調等優(yōu)點,可以靈活地進行從大小鼠痛覺過敏到異常性疼痛的多種疼痛實驗。設備的靜音運行模式可將實驗動物的干擾降到**,保證動物每次的傷害性反應都可在無拘束的自然條件下得出;并可通過U盤將實驗數據導出為CSV文件,方便數據統計與處理。
在主機設置初始溫度和目標溫度后,將大鼠(小鼠)放置在冷熱板上,冷熱板會以穩(wěn)定的速率進行降溫或加熱,當溫度達到疼痛的敏感性節(jié)點時,引起動物傷害性反應(后爪舔舐、退縮或跳躍)。
優(yōu)勢特點:
1. 三種溫度控制模式,升降溫速率自定義程度高
恒定溫度模式:可控制溫度在設定時間內持續(xù)穩(wěn)定。
線性升降溫模式:可控制單位時間內溫度變化速率恒定。
急速升降溫模式:可控制在*快時間達到目標溫度。
2. 大范圍溫度控制,冷、熱刺激雙模式
具有冷板和熱板兩種工作模式,-5℃至65℃大范圍溫度控制,切換控溫模式方便快捷??珊w多種動物模型,應用**,在疼痛實驗方案中獲得的數據更**。
3. 可通過軟件編輯多個溫控階段
系統標配X-PAD軟件,用戶可自定義多段升降溫模式,設置動物組別,并通過U盤將其上傳到冷熱板測試儀進行自動控制測試。
4. 具備數字鍵盤和腳踏板,記錄動物反應和刻板行為
標配數字鍵盤和腳踏板,可以預設 10 個按鍵用以記錄疼痛動物的異常反應和刻板行為(如舔、抓、跳、梳理、發(fā)聲、直立、靜止、攀爬、顫抖、抽搐)并將結果保存在測試主機中。
應用領域:
冷熱板測試儀**用于研究傷害感受器、溫度感知受體、冷熱異常性疼痛和痛覺過敏的基礎機制研究,以及炎癥與神經理性疼痛疾病中鎮(zhèn)痛藥物(如阿片類藥物)的精確、快速篩選測試,測試化合物抗傷害的藥效,如坐骨神經慢性收縮損傷(CCI)模型。
型號規(guī)格:
35300 | 冷熱板完整套裝,包括主機、數字鍵盤、動物活動籠、U盤及軟件等 |
參考文獻:
1.Orthofer, Michael, et al. "Identification of ALK in Thinness." Cell 181.6 (2020): 1246-1262.doi: 10.1016/j.cell.2020.04.034
2.Trendafilova, Teodora, et al. "Sodium-calcium exchanger-3 regulates pain “wind-up”: From human psychophysics to spinal mechanisms." Neuron 110.16 (2022): 2571-2587.
3.Cao, Chenxi, et al. "Cholesterol-induced LRP3 downregulation promotes cartilage degeneration in osteoarthritis by targeting Syndecan-4." Nature Communications 13.1 (2022): 7139. doi: 10.1038/s41467-022-34830-4
4.Prieto, Martin, et al. "Light activated pulsatile drug delivery for prolonged peripheral nerve block." Biomaterials 283 (2022): 121453. doi: 10.1016/j.biomaterials.2022.121453
5.Hou, Yiwen, et al. "Coordinated activity of a central pathway drives associative opioid analgesic tolerance." Science Advances 9.6 (2023): eabo5627. doi:
6.Xing, Lei, et al. "Expression of human‐specific ARH***11B in mice leads to neocortex expansion and increased memory flexibility." The EMBO journal 40.13 (2021): e107093.
7.Cetin, Zeynep, et al. "The Role of Hydrogen Sulfide in the Development of Tolerance and Dependence to Morphine in Mice." Neuropsychobiology 80.3 (2021): 264-270. doi: 10.1159/000511541
8.Ford, Neil C., et al. "Role of primary sensory neurone cannabinoid type-1 receptors in pain and the analgesic effects of the peripherally acting agonist CB-13 in mice." British journal of anaesthesia 128.1 (2022): 159-173.doi:10.1016/j.bja.2021.10.020
9.Blomqvist, Kim J., et al. "Systemic hypertonic saline enhances glymphatic spinal cord delivery of lumbar intrathecal morphine." Journal of Controlled Release 344 (2022): 214-224. doi:10.1016/j.jconrel.2022.03.022
10.Gan, Zheng, et al. "Repetitive non-invasive prefrontal stimulation reverses neuropathic pain via neural remodelling in mice." Progress in neurobiology 201 (2021): 102009.